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甲基化DNA檢測試劑盒說明書
DNA Methylation Kit
目錄號：K2140
保存：室溫
組分說明
Cat. No. K2140 K2140A
Kit Size 10 50
CT Conversion Reagent 10 reations 50 reations
M-Dissolving Buffer 10 reations（100 μl） 50 reations（粉末）
M-Dilution Buffer 400 μl 2 ml
M-Buffer PA 15 ml 60 ml
M-Wash Buffer（concentrate） 2 ml 15 ml
M-Elution Buffer 1 ml 10 ml
Buffer PS 5 ml 15 ml
Spin Column DS 10 50
Collection Tube（2ml） 10 50
產(chǎn)品簡介
本試劑盒采用高溫處理方法，縮短了轉變時間，提高了轉變效率，轉變效率可達到 99%以上。經(jīng)過 DNA亞硫酸氫鹽轉變，可回收得到大量 DNA。本試劑盒基本原理為 DNA 經(jīng)亞硫酸氫鈉處理后，可使未甲基化的胞嘧啶轉變?yōu)?/span>
尿嘧啶，而甲基化的胞嘧啶不變。
本試劑盒采用硅基質(zhì)膜式純化柱通過簡單的結合-洗滌-洗脫步驟，可從甲基化修飾后的溶液中回收純化 DNA，回收的DNA 純度高，完整性好，可直接用于測序、甲基化 PCR 檢測、芯片分析、連接和轉化、酶切、標記、顯微注射、PCR 和體外轉錄等各種分子生物學實驗。
注意事項
1. 產(chǎn)品配用方法：
（1）10次包裝配制方法：CT Conversion Reagent是固體混合物，一定要在第—次使用前制備好。將2 ml 無菌水、100μl M-Dissolving Buffer和300 μl M-Dilution Buffer加入到CT Conversion Reagent管中。 在55°C溶解并震蕩直至全部溶解。在使用之前將 CT Conversion Reagent 溶液在室溫(20°C -30°C)下避光保存。每管的CT Conversion Reagent是針對10次DNA 處理設計的，為了得到較好的結果, CT Conversion Reagent應當在制備后立即使用，如果不立即使用，可將CT Conversion Reagent 溶液在-20°C存儲1周，使用前，請務必將存儲的CT Conversion Reagent 溶液在室溫下解凍，并且通過振動或顛倒2分鐘以充分混勻，CT Conversion Reagent對光很敏感，所以要盡量減少在光下的暴露。
（2）50 次包裝配制方法：CT Conversion Reagent、M-Dissolving Buffer 均固體混合物，一定要在第—次使用前制備好。將 5ml 無菌水加入到 M-Dissolving Buffer 中震蕩溶解，待固體全部溶解后將 M-Dissolving Buffer 管中溶液全部轉移至CT Conversion Reagent 管中同時補加 5.5ml 無菌水。再將 1.5ml M-Dilution Buffer 加入到 CT Conversion Reagent
管中。在 55°C 溶解并震蕩直至全部溶解。在使用之前將 CT Conversion Reagent 溶液在室溫 (20°C -30°C)下避光保存。每管的 CT Conversion Reagent 是針對 50 次 DNA 處理設計的，為了得到較好的結果, CT Conversion Reagent 應當在制備后立即使用，如果不立即使用，可將 CT Conversion Reagent 溶液在-20°C 存儲 1 周，使用前，請務必將存儲的 CT Conversion Reagent 溶液在室溫下解凍，并且通過振動或顛倒 2 分鐘以充分混勻，CT Conversion Reagent 對光很敏感，所以要盡量減少在光下的暴露。
2. 第一次使用前應安裝試劑瓶標簽的說明先在M-Wash Buffer中加入無水乙醇。
自備試劑：無水乙醇、75%乙醇
操作步驟
每次制備的 DNA 范圍在 1 ng-4 μg 之間，最佳量為 500 ng-2μg。
1. 取 20 μl DNA 樣品，加入到離心管（自備）中，如果樣品量不足，用水補至 20μl。
2. 向 DNA 樣品中加入 2.2 μl 的 M-Dilution Buffer，混勻樣品。
3. 42℃水浴 30 分鐘。
4. 向上步得到的樣品中，加入 220 μl 配制好的 CT Conversion Reagent 溶液，混勻，80℃恒溫水浴鍋中避光孵育 60分鐘。
5. 向上步溶液中加入 480 μl M- Buffer PA，溫和上下顛倒混勻。
6. 柱平衡：向已裝入收集管（Collection Tube）的吸附柱（Spin Column CS）中加入 200 μl Buffer PS，12,000 rpm（~13,400×g）離心 2 分鐘，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱重新放回收集管中。
7. 將步驟 5 所得溶液全部加入到吸附柱（已裝入收集管）中，室溫放置 2 分鐘，12,000 rpm 離心 1 分鐘，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱重新放回收集管中。
注意：吸附柱最大容量為700 μl，若樣品體積大于700 μl可分批加入 。
8. 向吸附柱中加入 500 μl M- Buffer PA，12,000 rpm 離心 1 分鐘，倒掉收集管中的廢液， 將吸附柱放回收集管中。
9. 向吸附柱中加入 650 μl M-Wash Buffer（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000 rpm 離心 1 分鐘，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱放回收集管中。
10. 12,000 rpm 離心 2 分鐘，倒掉廢液，將吸附柱置于室溫數(shù)分鐘，以*晾干。
注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余乙醇去除，乙醇殘留會影響后續(xù)的酶促反應（酶切、PCR等）
11. 將吸附柱放入一個新的離心管（自備）中，向吸附膜中間位置懸空滴加 20 μl M-Elution Buffer（pH 8.5），室溫放置 2 分鐘。12,000 rpm 離心 1 分鐘收集 DNA 溶液。
12. 向收集的 20 μl DNA 中加入 2.2 μl M-Dilution Buffer，室溫靜止 30 分鐘。
13. 向溶液中加入 500 μl 預冷的無水乙醇顛倒混勻，沉淀 30 分鐘（建議置于-20℃沉淀，過夜沉淀效果更好）。
14. 12,000 rpm 離心 15 分鐘，輕輕倒掉上清，再用 75%乙醇洗滌一次。
15. 12,000 rpm 離心 1 分鐘，倒掉上清，室溫下待乙醇揮發(fā)后，加入 20 μl M-Elution Buffer 溶解，DNA 置于-20℃保存。此步收集的 DNA 可以用于后續(xù)相關實驗。
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